Микробиологическое исследование отделяемого нижних дыхательных путей на грибы (дрожжевые и мицелиальные) (Fungus identification in lower respiratory specimen by culture)

Синонимы: Посев на дрожжевые и плесневые грибы.

Sowing on yeast and mold fungi.

Краткое описание исследования «Микробиологическое исследование отделяемого нижних дыхательных путей на грибы (дрожжевые и мицелиальные)»

Посев мокроты и промывных вод бронхов на дрожжевые и плесневые грибы проводят с целью точной этиологической диагностики и определения чувствительности к антимикотическим препаратам in vitro. Данное исследование включает в себя выделение и идентификацию патогенных дрожжевых грибов с определением их чувствительности к антимикотическим препаратам, а также выделение и идентификацию плесневых грибов, прежде всего представителей рода Aspergillus, без определения чувствительности к антимикотикам.

Выделяемые микроорганизмы и возбудители:

• дрожжеподобные грибы (Candida spр., Cryptococcus spр.);
• плесневые грибы (Aspergillus spр. и др.)

С какой целью выполняют Микробиологическое исследование отделяемого нижних дыхательных путей на грибы (дрожжевые и мицелиальные)

Исследование проводят при наличии у пациента факторов риска или клинических признаков инвазивной грибковой инфекции.

Что следует учесть при проведении исследования «Микробиологическое исследование отделяемого нижних дыхательных путей на грибы (дрожжевые и мицелиальные)»

Данное исследование не предусматривает выявления бактериальных и вирусных возбудителей инфекций нижних дыхательных путей.

Литература

1. Анаев Э. Х. Аллергический бронхолегочный аспергиллез: гистопатология, диагностика и лечение //Практическая пульмонология. – 2018. – №. 3. 
2. Багирова Н. С. Инвазивные грибковые инфекции: пересмотр определений, новое в диагностике по данным EORTC/MSGERC //Злокачественные опухоли. – 2020. – Т. 10. – №. 3S1. – С. 39-48. 
3. Гусейнов Р. М. и др. Аллергический бронхолегочный аспергиллез как осложнение бронхиальной астмы //Медицинские новости. – 2020. – №. 6 (309). – С. 61-63. 
4. Кузнецов В. Д. и др. Сочетание аллергического бронхолегочного аспергиллеза (Aspergillus terreus) и хронического аспергиллеза легких (A. fumigatus). Описание клинического случая и обзор литературы //Проблемы медицинской микологии. – 2020. – Т. 22. – №. 1. – С. 28-35. 
5. Николаева Н. Г. и др. Хронический аспергиллез легких: обзор литературы и демонстрация собственных наблюдений //Вестник рентгенологии и радиологии. – 2021. – Т. 102. – №. 5. – С. 317-328. 
6. Солопова Г. Г., Масчан А. А., Новичкова Г. А. Рекомендации 2020 года по диагностике и терапии инвазивного аспергиллеза у детей с онкогематологическими заболеваниями //Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. – 2020. – Т. 19. – №. 1. – С. 158-166. 
7. Шагдилеева Е. В. и др. Инвазивный аспергиллез у детей: результаты проспективного исследования //Проблемы медицинской микологии. – 2021. – Т. 23. – №. 2. – С. 160-160. 
8. Carvalho-Pereira J. et al. Multiplex PCR based strategy for detection of fungal pathogen DNA in patients with suspected invasive fungal infections //Journal of Fungi. – 2020. – Т. 6. – №. 4. – С. 308. 
9. Denis J. et al. Evaluation of two commercial real-time PCR kits for Aspergillus DNA detection in bronchoalveolar lavage fluid in patients with invasive pulmonary aspergillosis //The Journal of Molecular Diagnostics. – 2018. – Т. 20. – №. 3. – С. 298-306. 
10. Denning D. W. Diagnosing pulmonary aspergillosis is much easier than it used to be: a new diagnostic landscape //The International Journal of Tuberculosis and Lung Disease. – 2021. – Т. 25. – №. 7. – С. 525-536. 
11. Egger M. et al. Blood Aspergillus PCR: the good, the bad, and the ugly //Journal of Fungi. – 2020. – Т. 6. – №. 1. – С. 18. 
12. Grancini A. et al. Evaluation of real time PCR Aspergillus spp. in bronchoalveolar lavage samples //New Microbiol. – 2018. – Т. 41. – №. 1. – С. 67-70. 
13. Guegan H. et al. Evaluation of MucorGenius® mucorales PCR assay for the diagnosis of pulmonary mucormycosis //Journal of Infection. – 2020. – Т. 81. – №. 2. – С. 311-317. 
14. Guegan H. et al. Improving the diagnosis of invasive aspergillosis by the detection of Aspergillus in broncho-alveolar lavage fluid: Comparison of non-culture-based assays //Journal of Infection. – 2018. – Т. 76. – №. 2. – С. 196-205. 
15. Jenks J. D., Salzer H. J. F., Hoenigl M. Improving the rates of Aspergillus detection: an update on current diagnostic strategies //Expert review of anti-infective therapy. – 2019. – Т. 17. – №. 1. – С. 39-50. 
16. Małek M. et al. Nested PCR for the detection of Aspergillus species in maxillary sinus samples of patients with chronic sinusitis //Revista Iberoamericana de Micología. – 2018. – Т. 35. – №. 3. – С. 140-146. 
17. Mikulska M. et al. Aspergillus‐PCR in bronchoalveolar lavage‐diagnostic accuracy for invasive pulmonary aspergillosis in critically ill patients //Mycoses. – 2022. – Т. 65. – №. 4. – С. 411-418. 
18. Rath P. M., Steinmann J. Overview of commercially available PCR assays for the detection of Aspergillus spp. DNA in patient samples //Frontiers in Microbiology. – 2018. – Т. 9. – С. 740. 
19. Sabino R., Simões H., Veríssimo C. Molecular detection of Aspergillus: application of a real-time PCR multiplex assay in tissue samples //Journal of Fungi. – 2020. – Т. 6. – №. 1. – С. 11. 
20. Subhagan H. et al. A simple high‐volume culture technique—Good substitute for polymerase chain reaction for the detection of Aspergillus species in bronchoalveolar lavage samples //Mycoses. – 2022. – Т. 65. – №. 1. – С. 24-29. 
21. Vergidis P. et al. High-volume culture and quantitative real-time PCR for the detection of Aspergillus in sputum //Clinical Microbiology and Infection. – 2020. – Т. 26. – №. 7. – С. 935-940. 
22. Wehrle‐Wieland E. et al. Diagnosis of invasive mold diseases in patients with hematological malignancies using Aspergillus, Mucorales, and panfungal PCR in BAL //Transplant Infectious Disease. – 2018. – Т. 20. – №. 5. – С. e12953. 

Правила подготовки к исследованию «Микробиологическое исследование отделяемого нижних дыхательных путей на грибы (дрожжевые и мицелиальные)»

Исследование проводят до начала приема противомикробных препаратов и иммуномодуляторов или спустя 12-14 дней после окончания приема лекарственных средств.

Сбор биоматериала проводится натощак или не ранее, чем через 2 часа после приема пищи и питья, до полоскания и других видов лечения.

См. инструкцию по сбору мокроты

В каких случаях проводят Микробиологическое исследование отделяемого нижних дыхательных путей на грибы (дрожжевые и мицелиальные):

Как самостоятельное исследование или в качестве дополнения к посеву на микрофлору (тест № 472) при подозрении на грибковую инфекцию бронхолегочной системы:

• у пациентов с повышенным риском заражения инвазивным аспергиллезом (при лейкозах, после трансплантации костного мозга или паренхиматозных органов);
• у пациентов с ослабленным иммунитетом, с тяжелым иммунодефицитом и пациентов в критическом состоянии;
• у пациентов, длительное применяющих кортикостероиды, при наличии сахарного диабета, обширных ожогов и недавно перенесших серьезные операции.

Интерпретация результатов исследований содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

Формат представления результата

Описательный (для описательного и иного формата).

Трактовка результатов исследования «Микробиологическое исследование отделяемого нижних дыхательных путей на грибы (дрожжевые и мицелиальные)»

В норме рост плесневых грибов отсутствует. Любое их количество следует расценивать как клинически значимое.

Обнаружение дрожжевых грибов может быть связано с контаминацией мокроты при прохождении через верхние дыхательные пути. Клинически значимым считается титр 10^4 КОЕ/тампон и выше.